Vorbereitungsphase: Überprüfen Sie die Pasteurpipette, um sicherzustellen, dass sie intakt ist und die Skalen deutlich lesbar sind. Wenn sterile Bedingungen erforderlich sind, öffnen Sie die einzeln versiegelte Verpackung in einem sauberen Labor (Laminar-Flow-Haube) und achten Sie darauf, direkten Handkontakt mit der Pipettenspitze zu vermeiden. Bei unsterilen Pipetten kann die Desinfektion durch Abwischen mit Alkohol erfolgen.
Flüssigkeitsansaugung: Führen Sie die Pasteurpipette senkrecht in die Flüssigkeit ein und drücken Sie dann vorsichtig den Gummiball zusammen oder verwenden Sie eine mechanische Pipettierhilfe, um die Flüssigkeit aufzusaugen. Es wird empfohlen, eine Aspirationsrate von 1–2 ml pro Sekunde einzuhalten, um die Bildung von Luftblasen zu verhindern. Positionieren Sie Ihre Augen beim Ablesen des Volumens auf Höhe des Flüssigkeitsmeniskus, um Parallaxenfehler zu minimieren. Bei Pipetten mit feinen 0,1-ml-Unterteilungen sollte der Vorgang langsam und präzise durchgeführt werden.
Transfer und Abgabe: Bewegen Sie die Pasteurpipette zum Zielbehälter und geben Sie die Flüssigkeit langsam ab. Sie können die Spitze vorsichtig an der Behälterwand berühren, um Restflüssigkeit zu minimieren. Zu den möglichen Gefahren gehören: übermäßiges Zusammendrücken, das zu Flüssigkeitsspritzern führen kann (insbesondere bei ätzenden Substanzen), oder unsachgemäße Entsorgung nach dem Gebrauch, was zu Kreuzkontaminationen führen kann. Nach dem Experiment müssen Einwegpipetten in dafür vorgesehene Behälter für biologisch gefährliche oder chemische Abfälle entsorgt werden und dürfen nicht wiederverwendet werden.
Lagerbedingungen: Unbenutzte Pasteurpipetten sollten in einer trockenen, lichtgeschützten Umgebung gelagert werden. Die empfohlene Lagertemperatur beträgt 15–25 Grad; Vermeiden Sie hohe Temperaturen oder übermäßige Luftfeuchtigkeit, da diese Bedingungen die Stabilität des Materials beeinträchtigen können.